巴氏染色液固定的目的細胞制片的迅速固定是制片過程中關鍵的一步，否則會影響細胞學診斷的準確性。對于不同的標本需要不同的固定方法。zui為常用的固定方法是95%酒精作為固定液的濕固定法。酒精作為一種脫水劑能夠防止細胞內(nèi)的酶捋蛋白質分解而自容，并凝固細胞內(nèi)的物質如蛋白質、脂肪和糖類等，使其保持與組織生活相仿的成分，從而使細胞各部分，尤其核染色質易于著色。對于巴氏染色來說，酒精固定zui為重要的。如果酒精濃度不足引起的固定不佳，可造成細胞的人為變化，并可導致假陽性或假陰性的診斷。固定方法濕固定法：作為用95%酒精固定液固定的細胞學標本一定使用濕固定法。制片制備完后，趁標本新鮮而又濕潤時，立即放入盛有95%酒精的固定缸內(nèi)。制片在固定液內(nèi)至少保持15-30min。固定時間通常不超過1周。這種制片染色后，顏色鮮艷，結構清晰。如果細胞制片需要送至另一實驗室或郵寄他處染色時，可以固定15min后，把制片取出后立即密封的容器中或者使用甘油防止制片干燥。因為無論固定前或固定后的制片，如果發(fā)生干燥后都會影響染色的效果。

     巴氏染色液固定注意事項,固定液的過濾：為了防止細胞污染，凡是使用過的固定液，必須過濾后才能再使用。使用過長的固定液，必須用酒精相對密度計測定，酒精濃度低于90%時應該及時更換新液。濕固定的重要性：標本再新鮮時及時固定時保證染色效果的重要因素。如蘇木素對細胞核的染色，巴氏染色中胞漿的特殊著色作用，均可因標本干燥后固定而大受影響。制片標本的郵寄：標本再固定15min后取出，立即加甘油數(shù)滴于制片上，裝入密封的小盒中。實驗室在收到標本后，先浸入95%酒精中，使甘油溶去，再進行染色。更多相關知識,請咨詢本公司,一起開拓未來.